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        CEF雞胚成纖維細胞傳代操作

        2017-03-16 瀏覽次數:5484

        細胞傳代操作:
        1.吸除培養瓶內舊培養液。
        2.加入無菌pbs洗液(5-8mL)輕輕潤濕細胞,稀釋多余的培養基,之后吸走洗液,動作要輕,不可吹打到細胞。
        3.向瓶內加入含0.25%EDTA的胰蛋白酶混合液少許,以能覆滿瓶底為限。
        4.置溫箱中2~5分鐘,一旦鏡檢發現細胞質回縮,細胞間隙增大后,細胞變圓,比較松動后,立即終止消化。
        5.加入該細胞對應的培養基6mL(T25培養瓶)或12mL(T75培養瓶)終止消化。
        6.用吸管通過吸取的培養基輕輕反復吹打瓶壁細胞,使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。吹打時應盡量以zui少的次數將細胞從壁上吹下,不僅要控制吹打的力度、次數,還要注意要將細胞盡可能吹成單個。這樣既能減少死細胞,又能便于細胞再次均勻貼壁生長。
        7.依據傳代比例,將細胞懸液分瓶,再補充培養基后,靜置于溫箱培養,直止貼壁。
         貼壁細胞在培養瓶長成致密單層后,繼續生長的空間不足,培養基中的營養成份也消耗較多,同時代謝廢物也有較多堆積,需要分瓶培養,對細胞進行傳代擴增。對于貼壁不太緊的細胞如293,可以直接吹散后分瓶。而對于貼壁較緊的細胞如CHO,則需要以胰酶消化后再吹散分瓶。以筆者的經驗,以輕吹或加培養液后輕搖可下較好,但對于經驗不太充分的實驗者而言是較難判斷掌握的。
           胰酶消化的程度是一個關鍵:消化過度則對細胞的活性影響較大,并有部分細胞漂浮,隨棄去的胰酶流失;消化不足則細胞難于從瓶壁上吹下,反復吹打同樣也會損傷細胞活性。影響消化速度的因素較多,主要有胰酶溶液的活性(配制條件、凍存或4℃保存時間長短、是否反復凍融、解凍后存放時間及溫度等)、消化時的溫度(氣溫、細胞培養瓶及胰酶溶液的溫度)以及所加胰酶溶液的多少等。含有EDTA的胰酶會比不含的消化能力強很多,不同細胞對消化液的敏感性也不同,比如HEP-G2人肝癌細胞,該細胞消化時間可長達10分鐘左右。 消化時間仔細去摸索一下,每過2分鐘鏡下觀察細胞是否變圓,記錄*消化時間,下一次操作參考之前的記錄來控制時間即可。對于懸浮細胞換液時只需要補液就行。
           懸浮細胞的傳代則不需要用胰酶消化,直接通過計數算好傳代的比例,直接分瓶,補液。有些懸浮細胞趨于成團生長,此時細胞生長狀態良好,當補液時,避免吹打。典型實例:jurkat就是成團生長。當jurkat細胞密度比較大時,可將培養瓶豎直放置2分鐘左右,待大部分細胞沉下,吸走上層清液,補充等量的新鮮培養基。而 HL-60 就不一樣了,為懸浮單個生長,如果發現該細胞包團,說明細胞狀態不好,不加以正確的處理,zui終會發生凋亡。

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